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[Python知识库]RNA-seq之QAPA量化后差异分析

RNA-seq之QAPA量化后差异分析


最近导师想看看AMD数据在转录层面有什么差异,所以先做了QAPA量化,从RNA-seq数据分析替代多聚腺苷酸化(APA)。 QAPA的安装和使用在GitHub上有详细的教程,附上链接 其实现在做APA量化分析的主流软件是 DaPars2,但是,我前面研究的时候,跑不通GitHub上的package,我真的急了什么都干得出来,在服务器上调试麻烦,我就拎到Windows上跑,还把人家一个.py文件拆开成两部分,在Windows上跑出中间文件temp_out,后面因为bedtools和它的Python“平替”——pybedtools都只能在linux上跑,所以用中间文件在服务器上跑了,估计除了我别人不会这样了!!但是废了这么大劲还是没戏,我觉得是我的数据下载的不对,DaPars2的Readme真的不如QAPA( 附上链接),数据来源(仿照example在UCSC下载,但是没有属性名,只知道12列)。当然我用他的sample成功了,他用的hg19,现在大多数用hg38了。 之所以觉得是我的数据下载不对,是因为我在UCSC上又下载了hg19,跑数据的时候有error,和我在hg38同样的error,淦!大无语事件!搞不懂!

希望DaPars2配成功的宝贝可以私信教教我~

差异分析——求pvalue

1、数据集

给大家一个test数据,提取码:qapa
qapa quant 后的数据大概长这样(下文中这个文件:D:/RData/qapa_df/GSE99287/pau_results_99287.txt
在这里插入图片描述
这么看真别扭,看下面这个吧
在这里插入图片描述
具体每一步就不写了,注释写在code里面,大家自己读一读吧!**看完觉得so easy哦!**我平时用Python多,但是做这个的时候觉得R更快,我几乎不用,都是现查现学,所以整体效率还欠佳,但是后续用的多了知道的多一些可能会有提升!这个就当是练手了。

2、思路流程

希望大家养成好的代码习惯,在解决问题之前先写好框架(本科老师以前教过伪代码,但是我全忘记了,不记得格式什么的,所以很粗糙的写个大概每一步要做的),这个可以帮助我缕清思路。任何时候拿到task先不着急上手,想逻辑,逻辑整清楚,知道每一步做什么,再上手,节省时间而且高效!

2.1 读数据

2.2 去除多余属性,得到拼接矩阵

拼接矩阵格式:
gene_name:normal_PAU:amd_PAU:normal_TPM:amd_TPM

2.3 卡TPM值

(1)在amd和normal中每个都至少存在3个TPM>1的值
(2)卡完TPM后将拼接矩阵分割,不要TPM列

2.4 秩和检验求pvalue

(1)秩和检验求p值
(2)求矫正后的p,即p.adjust
(3)卡pvalue<0.05,存为resCOX

2.5 t 检验求pvalue

(1)删除一行中全部相同的rows
(2)t检验求p值
(3)求矫正后的p,即p.adjust
(4)卡pvalue<0.05,存为resT

2.6 存储数据

重要结果直接存本地,下次直接看,不用重新浪费时间跑了!(懒人最大的福音!我就是)

3、Coding

setwd('D:/RData/qapa_df/GSE99287')
#读入qapa的结果
qapa<-read.table('D:/RData/qapa_df/GSE99287/pau_results.txt',header = T,row.names =1)#读文件
normal<-read.table('D:/RData/qapa_df/GSE99287/normal.txt')#读normal数据,正常数据作为对照组
amd<-read.table('D:/RData/qapa_df/GSE99287/amd.txt')#读amd数据
sample_num=nrow(normal)+nrow(amd)#所有样本数
#创建normal和amd的column-name
for(i in 1:nrow(normal)){
  normal[i,2]=paste(normal[i,1],"_quant.PAU",sep = "")
  normal[i,3]=paste(normal[i,1],"_quant.TPM",sep = "")
}
for(i in 1:nrow(amd)){
  amd[i,2]=paste(amd[i,1],"_quant.PAU",sep = "")
  amd[i,3]=paste(amd[i,1],"_quant.TPM",sep = "")
}
#将原数据提取出基因名,PAU和TPM拼接为新的数据
#得到的数据大概是gene_NAME:nature_PAU:amd_PAU:nature_TPM:amd_TPM
qdata<-qapa[3]#基因名
#normal_PAU
cols_normal=which(colnames(qapa) %in% normal[,2])
for(i in 1:length(cols_normal)){
  qdata<-cbind(qdata,qapa[cols_normal[i]])
}
#amd_PAU
cols_amd=which(colnames(qapa) %in% amd[,2])
for(i in 1:length(cols_amd)){
  qdata<-cbind(qdata,qapa[cols_amd[i]])
}
#normal_TPM
cols_normal=which(colnames(qapa) %in% normal[,3])
for(i in 1:length(cols_normal)){
  qdata<-cbind(qdata,qapa[cols_normal[i]])
}
#amd_TPM
cols_amd=which(colnames(qapa) %in% amd[,3])
for(i in 1:length(cols_amd)){
  qdata<-cbind(qdata,qapa[cols_amd[i]])
}
qdata<-na.omit(qdata)#删除有NA的所有行
#卡TPM值,TPM>1.normal 和 amd中都至少有三个样本的TPM>1
pv_data=qdata
delrow_tpm<-c()
j<-1
tpm_normal_start=sample_num+2
tpm_normal_end=tpm_normal_start+nrow(normal)-1
tpm_amd_start=tpm_normal_end+1
tpm_amd_end=ncol(pv_data)
for(i in 1:nrow(pv_data)){
  normal_tpm_count=sum(colSums(qdata[i,tpm_normal_start:tpm_normal_end]>1))
  amd_tpm_count=sum(colSums(qdata[i,tpm_amd_start:tpm_amd_end]>1))
  if(normal_tpm_count<3||amd_tpm_count<3){
    delrow_tpm[j]<-i
    j<-j+1
  }
}
pv_data<-pv_data[-delrow_tpm,]
sltedData<-pv_data[,1:(sample_num+1)]
#做检验,求p值
gene_num<-c(1:nrow(sltedData))
normal_start=2
normal_end=2+nrow(normal)-1
amd_start=normal_end+1
amd_end=ncol(sltedData)

p.w<-rep(NA,nrow(sltedData))
for(i in gene_num){
  p.w[i]<- wilcox.test(as.numeric(sltedData[i,normal_start:normal_end]),as.numeric(sltedData[i,amd_start:amd_end]),paired = FALSE)$p.value;
}
#秩和检验结果,卡p值
p.w<- as.numeric(p.w)
fdr.w<-p.adjust(p.w,method="fdr",length(p.w)) 
resCox<-cbind(sltedData[1],p.w,fdr.w)
resCox<-subset(resCox,p.w<0.05)

#t检验数据处理,全0或全100都删除
tdata=sltedData
tdata$sum=rowSums(tdata[,2:ncol(tdata)])
delcol<-c()
j<-1

for(i in gene_num){
  if(tdata[i,60]==0||tdata[i,60]==5800){
    delcol[j]<-i
    j<-j+1
  }
}
tdata<-tdata[-delcol,]
p.t<-rep(NA,nrow(tdata))
for(i in 1:nrow(tdata)){
  p.t[i]<- t.test(tdata[i,normal_start:normal_end],tdata[i,amd_start:amd_end],paired = FALSE)$p.value;
}
#t检验数据处理,拼接后,p-adjust
fdr.t<-p.adjust(p.t,method="fdr",length(p.t)) 
resT<-cbind(tdata[1],p.t,fdr.t)
resT <- subset(resT, p.t < 0.05 )

write.csv(resCox,file = 'different_gene.csv')

4、坑!巨坑!——字符串拼接(paste)

normal[i,2]=paste(normal[i,1],"_quant.PAU",sep = "")

paste(a,b)函数默认的拼接的时候会在a和b之间加空格!!一定要加sep="",才是"无缝衔接"

5、小tips

5.1 矩阵拼接

cbind()列拼接:左右
rbind()行拼接:上下

5.2 判断一行有几列满足特定条件

sum(colSums(qdata[5,1:20]>1))

第5行从第1列到第20列数据中大于1的列数。好用的!

886,去吃饭了,回来跑着editing数据再写一篇富集分析!

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加:2022-03-06 12:58:23  更:2022-03-06 12:58:57 
 
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